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一、概述
Magarose®️是厦门美博泰生物独家注册的琼脂糖磁性微球商标，内含顺磁性纳米颗粒的琼脂糖（6％）交联而成，粒径10~30 μm，保证了高比表面积、易悬浮、快速磁分离等特性，显著加速操作和实验的重现性。
环氧基活化琼脂糖磁珠（Magarose-Epoxy、Magarose-A-Epoxy）是公司新开发的活化好的磁珠，具有高密度的环氧基团，能与亲核剂在开环过程中反应。环氧基团与初级胺、硫醇或羟基反应，分别形成稳定的二级胺、硫酯和醚键。这种磁珠常用于固定抗体、酶及其他蛋白质，同时保持其生物功能。该反应高度稳定，确保随着时间推移，固定生物分子的浸出最小化。
图1. 环氧活化琼脂糖磁珠对亲核分子的共价固定
二、产品特性
产品名称
Magarose-Epoxy短臂
Magarose-A-Epoxy长臂
货号
PMAG014
PMAG 015
磁珠浓度
25% (v/v) in 100% IPA
配基密度
60 ~70 μmol / ml磁珠
介质
6%交联磁性琼脂糖
粒径
10 ~ 30 μm
配体结合
>20 mg BSA/ml磁珠
保存
常温运输，2~8℃保存一年
注：磁珠蛋白结合量与目标蛋白特性相关，此处仅作参考值。
三、使用方法
1. 产品特点
w 偶联条件温和（pH8-10，温度4-45℃，时间1-16小时，可以在水相或有机相中偶联），偶联效率高（配基密度60~70 μmol/mL）。
w 磁珠不需要处理，直接计算合适的量用于偶联，缩短时间。
w 保存时间长，-20℃可以保存2年，不能够受潮。
w 刚性强，流速快(300 cm/h，100 kpa)。
w 可偶联含有氨基、巯基、羟基的多糖，蛋白，核酸，抗体等配基，应用范围广。
w 偶联后制备的亲和填料寿命长，流速快，特异性高。
2. 蛋白偶联操作步骤
以用该Epoxy 琼脂糖磁珠偶联牛血清白蛋白（BSA）为例：
1) 取20 ml活化琼脂糖磁珠，磁分离，50ml去离子水洗涤三次。磁分离，去除上清。
2) 取BSA 100 mg 溶解于10 mL的pH9.0的 0.25M 碳酸钠缓冲液中。
3) 将BSA 溶液加入磁珠中混合，在摇床上振荡，25℃偶联6小时。
4) 然后加50 mg 甘氨酸，再反应6个小时封闭剩余的基团。
5) 偶联了BSA 的磁珠，用1 M NaCl 溶液洗3-5次，收集偶联后剩余的液体以及洗涤的溶液测定BSA 的总量，再用纯水洗涤磁珠3次，最后将磁珠保存在相应蛋白保存缓冲液中。
6) BSA 的偶联量为25 mg/ml. 计算方法：BSA 的吸附载量=（G0—G1）/V。
· G0：BSA 总使用量，单位：mg；
· G1：偶联反应后未偶联的 BSA 的量，单位：mg；
· V：填料的体积，单位：mL；
注：该偶联方法可用于偶联单抗及其它蛋白，均能获得很好的偶联效果。偶联的物质如果是小分子的例如氨基酸或其他带-NH2、-SH、-OH等基团的小分子配基，那可以直接把配基加到0.05M NaOH中配置成10-20mg的溶液，其他条件不变。也可以提高偶联的温度，这样可以偶联密度更高。
3. 注意事项
1) 活化的磁珠现取现用，以免时间过长造成偶联活性降低。可以-20℃密封保存，这样可以保存放2 年。如果要偶联的蛋白不稳定，可在摇床上4℃振摇偶联12-16小时，以维持配基的活性。如果没有把握可以配相应浓度的配基溶液0.5-1mL，分别选择不同pH 及温度然后不加填料模拟偶联条件，到时间观察溶液是否有沉淀，如果有沉淀偶联效果就不好，这时可以稍微降低pH 或温度，同时可以加5%左右的甘油或PEG 保护蛋白,避免沉淀，总之对于任何配基最好能了解其溶解性及稳定性，避免实验失败导致损失。
2) 偶联配基后尽快清洗磁珠，避免在高pH 条件中，配基失活。
3) 更稳定的配基可以直接溶解于NaOH 溶液或者碳酸钠溶液中进行偶联，温度可适当提高，偶联时间则相应缩短至1-4小时。
4) 偶联蛋白的最适pH 为可以在8.0-10 左右，在室温或4℃均可，温度与pH 的提高均能增加配基的吸附载量，根据蛋白的稳定选择合适的pH 和温度，偶联蛋白溶液的浓度为5-20 mg/ml。磁珠体积和配基溶液的体积为1：1.5 或者为1：2。
5) 偶联的缓冲液包括碳酸盐、硼酸盐和磷酸盐缓冲液，但绝对不能使用Tris、甘氨酸等含有氨基的物质。
6) 偶联的物质如果是小分子化合物，例如氨基酸或其他带-NH2、-SH、-OH 等基团的小分子配基，那可以直接把配基加到0.05 M NaOH 中配置成10-20 mg/mL 的溶液，其他条件不变。也可以提高偶联的温度，这样可以偶联密度更高。
7) 在偶联中要把磁珠能混匀完全悬浮起来即可，避免剧烈搅拌使填料有小颗粒降低流速。
本试剂仅用于体外实验，不能用于临床、治疗和动物体内实验等，由此产生的后果概不承担责任。
本产品仅供科研用途！
客户发表论文：
1. Jiang S, Lin Y, Zheng S. Development of the IMP biosensor for rapid and stable analysis of IMP concentrations in fermentation broth[J]. Biotechnology Journal, 2024, 19(6): 2400040. （琼脂糖磁珠偶联蛋白）
2. Yang, Jiamei, et al. "A Facile Route for Oriented Covalent Immobilization of Recombinant Protein A on Epoxy Agarose Gels: In Situ Generation of Heterofunctional Amino‐Epoxy Supports." ChemistrySelect 3.37 (2018): 10320-10324.
3. Mateo, Cesar, et al. "Multifunctional epoxy supports: a new tool to improve the covalent immobilization of proteins. The promotion of physical adsorptions of proteins on the supports before their covalent linkage." Biomacromolecules 1.4 (2000): 739-745.
4. Tereshin, Mikhail N., et al. "Affinity Resins for the Isolation of Immunoglobulins G Obtained Using Biocatalytic Technology." International Journal of Molecular Sciences 25.3 (2024): 1367.
