客服热线
15805933710
地址：厦门市集美大道1300号
电话：15805933710
联系人：许先生
QQ：1974707632 (节假日可询)
微信：15805933710 (节假日可询)
邮件：purimag@139.com
关注PuriMag公众号
一、概述
Magarose®️是厦门美博泰生物独家注册的琼脂糖磁性微球商标，内含顺磁性纳米颗粒的琼脂糖（6％）交联而成，粒径10~30 μm，保证了高比表面积、易悬浮、快速磁分离等特性，显著加速操作和实验的重现性。
His-Tag 蛋白纯化磁珠（Magarose-IDA/NTA/TED）针对纯化 His 标签蛋白而研制的一种新型纯化介质，具有高效、快速、方便等特点，可通过磁分离方式直接从生物样品中一步纯化出高纯度的目标蛋白，极大地简化纯化工艺和提高纯化效率，适合科研和工业领域快速纯化His标签蛋白。
二、产品特性
产品名称
Magarose-
IDA-Ni
NTA-Ni
TED-Ni
货号
PMAG001-1Ni
001-2Ni
001-3Ni
磁珠浓度
25%（v/v）in 20% EtOH
配基
IDA or NTA or TED
介质
6%交联磁性琼脂糖
粒径
10 ~ 30μm
配体结合
40 ~ 60mg EGFP(27KD)/ml磁珠
保存
常温运输，2~8℃保存一年
注：IDA结合容量高，耐螯合剂差；NTA结合容量较高，耐螯合剂较好；TED结合容量低，耐螯合剂优异。
三、使用方法
1. 推荐的缓冲液
A. 可溶性His标签蛋白纯化所需缓冲液及配方
Binding Buffer: 20mM PBS, 500mM NaCl, 5~20mM咪唑, pH7.4;
Wash Buffer: 20mM PBS, 500mM NaCl, 20~100mM咪唑, pH7.4;
Elution Buffer: 20mM PBS, 500mM NaCl, 300-500mM咪唑, pH7.4;
B. 包涵体His标签蛋白纯化所需缓冲液及配方
Binding Buffer: 8M Urea, 50mM NaH2PO4, 100mM Tris·HCl, pH8.0;
Wash Buffer: 8M Urea, 50 mM NaH2PO4, 100 mM Tris·HCl, pH6.3;
Elution Buffer: 8 M Urea, 50 mM NaH2PO4, 100mM Tris·HCl, 300-500 mM 咪唑, pH4.5;
Note: Buffer 在使用前需 0.22或0.45 μm滤膜过滤除菌。推荐Buffer 体系适用于多数His标签蛋白的纯化，在 Binding Buffer 中添加一定浓度咪唑可降低非特异性结合，提高目的蛋白纯度。初次使用可采用推荐的缓冲液，再根据实验结果适当调整缓冲液中的咪唑浓度。
2. 样品准备
2.1组氨酸标签蛋白样品准备（在大肠杆菌下非变性条件下可溶性表达）
稀释重组表达的蛋白：每克大肠杆菌菌体加入5~10 ml binding buffer重悬。样品和binding buffer含同样浓度的咪唑可避免宿主细胞表达的含组氨酸的蛋白。同时要去除大颗粒和高浓度的螯合剂，如EDTA，组氨酸、柠檬酸等杂质，防止破坏Ni-NTA磁珠。
1. 酶解：0.2 mg/ml 溶菌酶，20 μg/ml DNase，1 mM MgCl2，1 mM PMSF（终浓度）或其他蛋白酶抑制剂。加入的抑制剂须对磁珠无影响，4°C混匀30min。
2. 机械裂解：超声，均质，反复冻融等。
3. 调整裂解液的pH到7.4：不要用强碱或酸调节pH（防止沉淀）。
4. 裂解液离心：将液体移至离心管，室温或4°C下12000 rpm离心20 min，温度选择根据蛋白稳定性。
5. 收集上清或收集离心后沉淀准备下一步实验。
6. 对于在酵母、昆虫及哺乳动物细胞系统中表达的蛋白，如有大量上清液可用硫酸铵进行蛋白沉淀。用1× PBS透析，加入到磁珠中，如样品不含EDTA、组氨酸、柠檬酸等影响磁珠成分，可直接纯化。
2.2组氨酸标签蛋白样品准备（在大肠杆菌中包涵体表达变性条件纯化）
1. 用1×PBS悬浮细胞（每ml细菌沉淀约5 ml 1× PBS），按照上面的超声条件进行实验。
2. 裂解液在12,000 rpm离心10 min收集包涵体。用1×PBS洗涤几次包涵体。
3. 用Binding/Wash buffer溶解包涵体（每ml包涵体约5 ml Buffer），并在室温下孵育30~60 min。可能需要均质或超声将沉淀完全溶解。
4. 12,000 rpm离心30 min去除不溶物。小心的将上清转移到干净的管中而不触碰下面的沉淀。
2.3组氨酸标签蛋白纯化步骤
1. 磁珠准备：将Ni-NTA磁珠充分混匀，使用移液器取0.1 ml 的磁珠悬浮液，（磁珠沉降体积25μl）置于离心管中，磁分离，待溶液澄清，吸弃清液，加入ddH2O反复清洗，去除酒精。
2. 磁珠平衡：加入0.5 ml Binding Buffer，反复吹打5-10次，磁分离，吸弃清液，重复洗2次。
3. 磁珠与目的蛋白结合：用1ml Binding Buffer悬浮0.2 g湿菌体，破胞后即为目的蛋白粗样，将粗蛋白加入磁珠，颠倒混匀。室温孵育15 min（如目标蛋白不稳定，2-8°C下孵育30 min）。
4. 洗杂：置离心管于磁分离器，移出上清液，保留以备取样检测。向离心管中加入1 ml Wash Buffer，吹打5-10次，磁分离，吸取上清液，保留以备检测。重复洗杂步骤3次以上。
5. 洗脱：用户可根据需要改变洗脱体积调整目标蛋白浓度，加入0.1-1 ml Elution Buffer 加入到离心管中，重悬磁珠，磁分离，吸取上清液，即为目的蛋白组分。重复上述步骤多次，分别收集洗脱组分并留样检测，以提高目的蛋白回收量。
6. 磁珠后处理：加入0.5 ml Elution Buffer，重悬磁珠，磁分离，吸弃上清，重复该步骤2次。再用0.5 ml ddH2O反复清洗3-5次。最后，加入0.2 ml 20%的乙醇溶液，使总体积等于初始磁珠悬浮液体积，保存于2-8°C。
7. SDS-PAGE检测：纯化样品SDS-PAGE 检测。
8. 磁珠再生：磁珠连续使用三次以上，其结合目标蛋白能力会降低，建议进行磁珠再生处理。
Stripping Buffer: 20 mM Sodium Phosphate, 500 mM NaCl, 100 mM EDTA, pH 7.4
Washing Buffer（可选）: 0.5 M NaOH, 2 M NaCl
Recharge Buffer: 100 mM NiSO4（该化学试剂有一定毒性，可能造成过敏，使用时务必注意）以5 mL 25%（v/v）磁珠悬液为例，详细说明磁珠再生操作：
1) 将磁珠悬液磁分离，去除上清，离心管中加入5 mL ddH2O，重悬磁珠，磁分离去上清。
2) 加入5 mL Stripping Buffer，重悬磁珠，室温混旋5 min，磁分离，去上清。重复此步骤1次。
3) 加入5 mL ddH2O，重悬磁珠，磁分离去上清，重复此步骤 2次。
4) 碱处理：加入5 mL Washing Buffer，重悬磁珠，室温旋混5 min，磁分离，去上清。加入5 mL ddH2O，重悬磁珠，磁分离，去上清。ddH2O重复洗3~5次，至洗涤液中性。
5) 加入5 mL Recharge Buffer，重悬磁珠，室温旋混20 min，磁性离，去除上清液。
6) 加入5 mL ddH2O，重悬磁珠，磁性离，去上清。重复此步骤4次以上，保证镍离子去除完全。
7) 加入2ml 20%的乙醇溶液，使总体积等于初始磁珠悬浮液的体积，保存于2-8°C。
3．注意事项
1) 磁珠避免冷冻、干燥和高速离心；
2) 使用产品前务必充分振荡使磁珠均匀悬浮；
3) 磁珠与溶液混合过程中，如果溶液粘稠无法通过翻转离心管重悬磁珠，可采用移液器反复吹吸或短时漩混使磁珠充分重悬；
4) 用户可根据实际需要保留经磁分离移去的上清，进行检测分析；
5) 本产品重复使用时建议纯化同种蛋白，纯化不同蛋白时，建议使用新磁珠；
产品仅供科研用途！
参考文献
1. Yin, Qin, et al. "Morphology-engineered nickel-iminodiacetic acid functionalized agarose magnetic microspheres for enhanced polyhistidine-tagged protein purification." Carbohydrate Polymers (2026): 125318.
2. Liang, Zhicheng, et al. "Food-grade production of recombinant human serum albumin in Kluyveromyces lactis and evaluation of its biological activity." Preparative Biochemistry & Biotechnology (2026): 1-8.
3. Fan, Xuqian, et al. "Rewiring CYP11A1-coupled electron transfer boosts de novo progesterone production in yeast." Metabolic Engineering (2026): 102548.
4. Yang, Kuoqi, et al. "Multiplexed Isotope-Coded Mass Spectrometry Footprinting Enables Broad Heteroatom-Residue Mapping and Uncovers Noncanonical Ligand-Binding Sites in Amyloidosis Proteins." Analytical Chemistry 98.4 (2026): 2709-2721.
5. Sun, Ya‐Lan, et al. "Identification of oviposition attractants for Peridroma saucia based on characterization of the female antennal‐predominant odorant‐binding protein PsauOBP6." Pest Management Science 82.7 (2026): 6999-7008.
6. Zhu, Zhijian, et al. "HnRNP A1 and A2B1 enforce Ezh2 mRNA splicing to promote germinal center B cell responses." Nature Communications 17.1 (2026): 7436.
7. Shi, Jiajun, et al. "Fungal effector CgCAP1 suppresses the MdMVQ4-MdWRKY100-MdChi5 immune module during Colletotrichum gloeosporioides infection." Plant Physiology (2026): kiag396.
8. Wang, Beifang, et al. "OsCPK12‐OsATPD1 Module Regulates Photosynthetic Acclimation to Light Stress in Rice." Advanced Science: e77268.
